食品科学技术21603 - page 75

4摇
不同波长下苏丹红
HPLC
Fig. 4摇 HPLC chromatogram of Sudan 郁 at
different detection wavelengths
的杂质含量有差异
,
其中
280 nm
下杂质吸收较高
254,280,500 nm
下苏丹红
的检测纯度分别为
88郾 2% ,83郾 8% ,93郾 4% ,
可见使用
500 nm
作为检测
波长所得到的检测纯度最高
,
难以发现杂质
,
而使用
280 nm
时其检测纯度大幅下降
,
所以应使用多个波
,
尤其是
254 nm
280 nm
等通用波长对苏丹红
标样纯度进行考究
本文后续的工作即是采用逆流
色谱对两个苏丹红样品进行了分离纯化
,
以提高其
纯度
2郾 2摇
苏丹红
的纯化
根据苏丹红的结构特性
,
选取非极性的
V
(
正己
) 颐
V
(
乙腈
) = 1颐 1
作为分离体系
,
上相为固定相
,
下相为流动进行分离
苏丹红
在不同柱体积下分
离的逆流色谱
,
见图
5。
先实验了少量样品在小体积柱上的分离效果
,
杂质与苏丹红
能够完全分离
,
如图
5a。
然后逐级
在半制备柱和制备柱上进行了放大分离
,
如图
5b
5c,
在较短时间内
,
都取得了很好的分离结果
苏丹红
粗样及分离后各级分的
HPLC
分析结
果见图
6。
由图
6
可知
,
通过一次逆流色谱分离
,
样品中主
要的杂质基本完全去除
苏丹红
的检测纯度
(
面积归一化法
,280 nm)
97郾 01%
提高到
98郾 42% ,
得率
(
产品质量
/
上样量
)
90郾 8% 。
254 nm
500 nm
下的纯化组分检测纯度也分别可以达到
98郾 01%
99郾 79% 。
2郾 3摇
苏丹红
的纯化
根据
HPLC
分析可知
,
苏丹红
样品中杂质较
苏丹红
中更多
,
纯度更低
,
纯化的难度要大
同样
先选取非极性的
V(
正己烷
):V(
乙腈
) = 1:1
作为
分离体系
,
上相为固定相
,
下相为流动进行分离
,
7。
先实验了少量样品在小体积柱上的分离效果
,
如图
7a,
杂质与苏丹红
不能很好分离
然后将稍
a郾 DE鄄Spectrum Vc
22郾 5 mL,
上 样 量
10 mg / 1 mL,
流 速
1
mL / min,
固定相保留率
80% ;b郾 DE鄄Spectrum Vc
135 mL,
上样
60 mg / 2 mL,
流速
6 mL / min,
固定相保留率
77郾 8% ;c郾 DE鄄MIDI
Vc
1 000 mL,
上样量
600 mg / 25 mL,
流速
45 mL / min,
固定相保
留率
70郾 2%
5摇
苏丹红
在不同柱体积下分离的逆流色谱
Fig. 5摇 High performance countercurrent chromatogram of
Sudan域 in different column volumes
a.
粗样
;b.
杂质
;c. Sudan 域
6摇 280 nm
条件下苏丹红
粗样及分离后各成分的
HPLC
分析
Fig. 6摇 HPLC chromatogram of Sudan域 crude sample and
different fractions under 280 nm
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食品科学技术学报
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