蔗糖
30 g,
干酪素
4 g,
琼脂
20 g,
自来水
1 000 mL。
3)
产酶培养基
:
蓖麻饼粕
1 g,
麦芽糖
2 g,NaCl
0郾 9 g,
自来水
100 mL。
各培养基灭菌条件均为
121 益,20 min。
1郾 3摇
仪器与设备
HH-B11
型电热恒温培养箱
,
天津市实验仪器
厂
;CHB - 213
型生物显微镜
,OLYPUS
公司
; SP -
2102UV
型紫外可见分光光度计
,
上海光谱仪器有
限公司
;CL -32L
型全自动智能高压蒸汽灭菌器
,
日
本
ALP
公司
。
1郾 4摇
实验方法
1郾 4郾 1摇
产蛋白酶菌株的筛选
将蓖麻饼粕稀释液涂布于平板上
,
多次分离后
得到单菌落
,
将单菌点接于蛋白酶选择性培养基上
,
根据透明圈的有无及大小初筛菌株
。
将初筛出来的
菌株进行摇瓶发酵复筛
,
测定发酵液中蛋白酶活力
,
选出酶活力最大的菌株作为产蛋白酶菌株
。
1郾 4郾 2摇
蛋白酶活力测定方法
采用
Folin
酚法测蛋白酶活力
[11]
,1 mL
发酵液
加
1 mL
质量分数为
2%
的酪蛋白液
,pH
值为
7郾 0,
40 益
水浴
10 min,
再加
0郾 4 mol / L
的三氯乙酸
2 mL,
保温
20 min
后离心取
1 mL
上清液
,
加
1 mL Folin
酚
在
5 mL 0郾 4 mol / L
的
NaCO
3
碱性条件下
40 益
水浴
20 min,
测
660 nm
下的吸光值
,
空白实验在加酪蛋白
液之前先加三氯乙酸
,
使酶失活
,
再加酪蛋白液
。
蛋白酶活力定义为
1 min
水解酪蛋白产生
1 滋g
酪氨酸所需酶量为一个蛋白酶活力单位
U。
1郾 4郾 3摇
产酶条件优化
将筛选出来的菌株接种到
50 mL
液体产酶培养
基中
,32 益,180 r / min
培养
2 d,
测定粗酶液中蛋白
酶活力
。
优化碳源
、
氮源
、
金属离子
、pH
值
、
接种量
、
培养时间对产酶的影响
。
在单因素实验的基础上
,
采用正交试验优化培养基组分
。
试验设麦芽糖
(A)、
饼粕
(B)、Na
+
(C)3
个因素
,
每个因素设
3
个
水平
,
因素与水平设计见表
1。
实验设空白列
,
每组
实验做
3
个平行
。
进行摇瓶发酵实验
,
确定最佳发
酵产酶培养基成分
。
2摇
结果与分析
2郾 1摇
蛋白酶菌株的筛选结果
2郾 1郾 1摇
蛋白酶菌株的初筛结果
将分离自蓖麻饼粕和实验室保存的菌株点接于
酪素平板上
,
以有无透明圈及透明圈大小作为初筛
依据
。
结果如表
2。
表
1摇
培养基成分正交试验因素与水平
Tab. 1摇 Orthogonal experiment factors and their levels for
optimization of medium components
水平
A
B
C
w
(
麦芽糖
) / %
w
(
饼粕
) / %
w
(NaCl) / %
1
1郾 0
1郾 0
0郾 8
2
2郾 0
2郾 0
0郾 9
3
3郾 0
3郾 0
1郾 0
表
2摇
产蛋白酶菌初筛结果
Tab. 2摇 Primary screening results of protease鄄producing strains
菌种编号
d
(
菌落
) / mm
d
(
透明圈
) / mm
M
4
5郾 5
B
2郾 5
3郾 5
P3鄄2
1郾 5
5
摇 摇
从表
2
可以看出
,
供试菌株虽然能够利用蛋白
质
,
但产生的蛋白酶活力不同
,
在菌落周围出现透明
圈大小也不同
。
根据透明圈的大小
,
可以初步判断
菌株产蛋白酶的能力
。
其中
,
菌株
M
和菌株
B
是实
验室保存的米曲霉和白地霉
,
菌株
P3鄄2
是从蓖麻饼
粕中分离出来的细菌
。
图
1
是菌株
P3鄄2
在添加酪
素的平板上生长及产生透明圈的情况
。
图
1摇
菌株
P3鄄2
在酪素平板上的透明圈
Fig. 1摇 Clearing zones of strain P3鄄2 on casein plates
2郾 1郾 2摇
蛋白酶菌株的复筛结果
将初筛出来的
3
株菌进行发酵产酶复筛
,
用福
林试剂法测定中性蛋白酶活力大小
,
比较酶活力大
小
,
选出酶活力最大的菌株为目标菌株
。
实验结果
如表
3。
从表
3
可以看出
,
在相同实验条件下
,
菌株
P3鄄2
的蛋白酶活性最高
,
后续实验选择其作为产蛋白酶
的菌株
。
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食品科学技术学报
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摇 2015
年
1
月