组分别分布于第一和第二象限
,
其肠道菌群结构与
模型组有较大区别
,
说明低剂量原花青素能改变高
脂肥胖大鼠体内肠道菌群结构
。
图
3(c)
为因子载荷图
。
以
“VIP冶
值大于
1
为标
准
,
初步筛选对解释组间差异重要的条带
,
共计
15
条
,
分别为
B1, B2, B12, B13, B16, B17, B18,
B19, B23, B24, B25, B27, B28, B31。
多重比较显
示
,
与模型组相比
,
低剂量组
B1, B2, B12, B13,
B16, B23, B25, B27
条带的相对丰度有显著差异
(
P
< 0郾 05,
阳性组与正常组因只有
2
个样本
,
未作
多重比较
)。
2郾 3摇
各组别的菌群结构分析
所有
36
个条带割胶测序
,
在
16S rRNA
数据库
中进行序列比对
,
以相似度
> 95%
为标准选取参考
菌株
,
用
Mega 6郾 0
软件
Neighbour鄄Joint
法构建系统
发育树
,
对条带所代表的微生物种群进行鉴定
,
鉴定
结果图
4。
图
4
显示
,
原花青素作用的部分关键菌
群为条带
B1 (
Blautia
spp. ),B2 (
Bacteroides
spp. ),
B12 (
Lactobacillus
spp. ), B13 (
Anaerostipes
spp. ),
B16 (
Blautia
spp. ), B17 (
Blautia
spp. ), B18
(
Clostridium
spp. ), B19 (
Anaerostipes
spp. ), B23
(
Lactobacillus
spp. ), B24 (
Lactobacillus
spp. ), B25
(
Lactobacillus
spp. ), B27 (
Anaerofilum
spp. )。
大
部分为目前已知的肠道微生物
,
说明该方法对主要
微生物类群有较好的分析效果
,
但是含量较少的微
生物
,
由于提取的
DNA
量有限
,
无法在电泳上分离
。
图
4摇
大鼠肠道菌群系统发育树
Fig. 4摇 Phylogenetic tree of gut microflora in rats
摇 摇
根据鉴定结果
,
分析各个条带所代表的菌的类
群
。
根据分析结果按照门
( phylum),
纲
( class),
目
(order)
对肠道菌群进行归类
,
得到肠道菌群主要类
群的相对丰度值分布如图
5。
从图
5
可以看出
,
各组大鼠肠道菌群主要由拟
杆菌门
( Bacteroidetes)、
厚壁菌门
( Firmicutes)
和变
形菌门
( Proteobacteria)
三个门构成
,
与
Hildebrandt
等
[10]
的研究比较
,
缺少柔膜菌门
( Tenericutes)。
各
组大鼠的肠道菌群以厚壁菌门所占比例最多
,
且其
中梭状芽胞杆菌纲
(Bacillales)
所占比例最大
,
其次
为乳杆菌目
( Lactobacillales)
和芽孢杆菌目
( Bacil鄄
lales)。
34
第
33
卷 第
5
期
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇
宋雪琳等
:
葡萄籽原花青素对营养肥胖模型大鼠肠道菌群的影响
