DOI:10.12301/spxb202200693
中图分类号:TS201.2
李姿坤1, 张喜瑞1, 郭雅娴1, 张满1, 贺红军1, 梁彬2, 李秀莲3, 姬长建4, 孙婵婵1
| 【作者机构】 | 1烟台大学生命科学学院; 2鲁东大学食品工程学院; 3滨州医学院药学院; 4齐鲁师范学院物理与电子工程学院 |
| 【分 类 号】 | TS201.2 |
| 【基 金】 | 山东省自然科学基金青年基金项目(ZR2020QC219),山东省自然科学基金博士基金项目(ZR2019BC036) 国家自然科学基金青年科学基金项目(32101904) |
*通信作者: 梁 彬,男,讲师,博士,主要从事食品微生物方面的研究;孙婵婵,女,副教授,博士,主要从事食源性大分子结构、营养与功能方面的研究。
油脂的过量摄入是导致人体胆固醇、三酰甘油、低密度脂蛋白、胆固醇升高的主要原因[1]。然而,单纯减脂会导致食品的不良口感,难以被消费者接受[2]。因此,如何通过加工工艺的改进,实现降脂而又不影响食品感官品质是当下食品工业面临的一项技术难题。
食品水相体系中的油脂往往由表面活性剂(甘油单酯、甘油二酯和蛋白质等)乳化,形成水包油型(O/W型)乳液。研究证实,油脂乳液的消化是机体胃肠道内表面活性物质与油滴表面的双亲物质发生竞争和替换,改变其界面结构和组成,进而消化吸收的过程[3]。人体内油脂的消化是肠液组分在油滴界面共同作用的结果。因此,采用定向设计高脂肪食品的乳液结构的方法,调控其与胃肠液的相互作用,从而减少食物中油脂的消化吸收[4],被认为是保持饮食健康又不降低感官品质的有效途径。
颗粒乳化剂是一类通过在油水界面形成单层或多层薄膜而阻碍乳液液滴聚集的纳米或微米尺寸的胶体粒子。颗粒乳化剂稳定的乳液被称为Pickering乳液[5]。由于颗粒乳化剂从界面解吸所需的能量远远高于布朗运动所具有的能量,因此Pickering乳液具有极高的稳定性。研究证实,虽然传统Pickering固体颗粒能不可逆吸附在油- 水界面,不能被消化道内胆盐界面取代并为脂肪酶- 辅脂酶提供吸附位点。但由于颗粒间具有较大的间隙,在胃肠消化道内胆盐等生物表面活性剂能进入颗粒间空隙,造成界面压力的持续增高,界面变形导致结构崩解。界面的崩解为脂肪酶- 辅脂酶提供充分的吸附位点[6]。较大的酶- 脂接触面促进了油脂的快速消化和亲脂性功能物质的充分释放[7],导致无法实现抑制油脂乳液被消化吸收的作用。
将高聚物经过适度交联后形成结构较为柔软的软凝胶颗粒不仅可具有传统Pickering固体颗粒的油水界面不可逆吸附特性,还可具有界面变形能力,能够形成致密的、无颗粒间隙的微凝胶颗粒界面层[8-9]。蛋白质具有两亲性质,能够通过自身结构的调整(如去折叠)吸附在油水界面形成蛋白膜,降低界面张力,常被作为界面乳化剂应用于泡沫型(蛋糕、啤酒和冰淇淋等)和乳液型(汤料、香肠和沙拉酱等)食品体系中[10]。采用湿热处理方法结合均质处理,将水溶性蛋白制成蛋白微凝胶颗粒,能够使其内埋的疏水基团暴露,从而改善蛋白质的润湿性,实现提高乳液稳定性的目的[11]。因此,推测蛋白软凝胶颗粒界面层能够有效抑制乳液油脂消化。
为验证此推测,本研究通过调控乳清蛋白微凝胶颗粒制备关键工艺参数——湿热处理pH值制备了一系列乳清蛋白微凝胶颗粒(whey protein micro-gel particle,WPMP),并测定了乳清蛋白微凝胶颗粒对乳液消化道稳定性和游离脂肪酸释放率的影响。
乳清浓缩蛋白(whey protein concentrate, WPC),新西兰恒天然公司;花生油,莱阳鲁花浓香花生油有限公司;盐酸,天津市北方天医化学试剂厂;氢氧化钠,北京鼎国生物技术有限责任公司;氯化钠,天津市北方天医化学试剂厂;十二烷基硫酸钠(sodium-dodecyl sulphate, SDS),天津市江天化工技术有限公司;氯化钾,北京鼎国生物技术有限责任公司;氯化钙,北京鼎国生物技术有限责任公司;黏蛋白,德国Sigma-Aldrich公司;胃蛋白酶,德国Sigma-Aldrich公司;胆汁提取物,德国Sigma-Aldrich公司;胰蛋白酶,德国Sigma-Aldrich公司;胰脂肪酶,德国Sigma-Aldrich公司。实验所用化学药品均为分析纯。
HAAKE MARS- Ⅲ型流变仪,德国赛默飞世尔科技;Ultra- Turrax T25型高速乳化均质机,德国IKA公司;BT- 9300S型激光粒度分布仪,丹东百特仪器有限公司;数显式电热恒温水浴锅,天津市欧诺仪器有限公司;PH- 3BW型pH计,上海理达仪器厂;DSC- 60plus型差示扫描量热仪,日本岛津公司;Turbiscan ASG型静态多散射稳定性分析仪,法国Formulaction公司。
1.3.1 WPMP的制备及结构表征
1.3.1.1 WPMP的制备
WPMP的制备共需2步。
1)湿热处理。将12 g的WPC均匀分散于100 mL去离子水中,分别采用1 mol/L NaOH水溶液或者1 mol/L HCl水溶液调pH值至3.5、4.5、5.5、6.5、7.5和8.5。将上述样品盛于烧杯,密封后置于水浴锅中85 ℃湿热处理28 min,4 ℃陈化10 h以上。
2)均质处理。用高速乳化均质机10 000 r/min处理4 min,采用等体积1 mol/L HCl水溶液或者1 mol/L NaOH水溶液调pH值至6.5,之后用1 mol/L NaCl补偿Na+含量差异。最后,对于不同pH值处理组别之间的溶液体积差异,使用微量H2O进行调整,以保证各组别中乳清蛋白微凝胶颗粒(WPMP)的质量浓度相同。制得的WPMP分散液用于实验测定。
在本研究中,不同pH值条件下制备的WPMP分散液中的WPMP样品分别命名为WPMP (3.5)、WPMP (4.5)、WPMP (5.5)、WPMP (6.5)、WPMP (7.5)和WPMP (8.5)。
1.3.1.2 pH值对WPMP粒径影响的测定
以水为分散介质,采用激光粒度分布仪测定WPMP (3.5)、WPMP (4.5)、WPMP (5.5)、WPMP (6.5)、WPMP (7.5)、WPMP (8.5) 6种WPMP的粒径分布。
1.3.1.3 pH值对WPMP热力学性质影响的测定
将WPMP分散液装入具盖塑料表面皿中,采用液氮速冻后,进行冷冻干燥,得到WPMP粉末。
准确称取WPC和6组不同的WPMP粉末样品2~5 mg放入铝盒中,以空铝盒为空白对照,进行温度扫描即得DSC曲线,起始温度为30 ℃,升温至150 ℃,升温速率为5 ℃/min[12]。采用TA- 60软件对DSC扫描曲线进行数据分析,计算得到各样品的变性温度和变性焓值。
1.3.1.4 pH值对WPMP流变性影响的测定
采用流变仪测定WPMP分散液的流变性。参数设定:夹具采用20 mm平行板;平行板间隙设定为1 mm;加样量为0.6 mL;测试环境温度设置为25 ℃;根据线性扫描结果确定应力为1.0 Pa。
设定剪切速率先从0 s-1上升到300 s-1,保持240 s,然后以同样的变化速率从300 s-1下降到0 s-1,记录黏度值随剪切速率变化的情况[13]。
采用牛顿幂律方程对静态流变曲线进行Power Law模型拟合,见式(1)。
τ=Kγn 。
(1)
式(1)中,τ为剪切应力,γ为黏性常数,K为稠度系数,n为流动特性指数。
采用相对触变环面积表征样品触变性差异。根据剪切黏度随剪切速率变化的静态流变曲线,对上、下行曲线进行面积积分计算,相对触变环面积SR计算方法见式(2)[14]。
(2)
式(2)中,Sup为上行曲线积分面积,Sdown为下行曲线积分面积。
1.3.2 油脂乳液的制备及表征
1.3.2.1 油脂乳液的制备
WPMP油脂乳液的制备。取60 g WPMP分散液,按照m(WPMP分散液)∶m(花生油)=2∶3的比例加入90 g花生油。然后室温下(25 ℃±2 ℃),于10 000 r/min均质处理5 min,制备得到含油质量分数为60%的WPMP油脂乳液。
WPC油脂乳液的制备。将12 g的WPC均匀分散于100 mL去离子水中,得到WPC分散液(pH=6.5)。取60 g WPC分散液,按照m(WPC分散液)∶m(花生油)=2∶3的比例加入90 g花生油。然后室温下(25 ℃±2 ℃),于10 000 r/min均质处理5 min,制备得到含油质量分数为60%的WPC油脂乳液。
1.3.2.2 油脂乳液的粒径分布
以质量分数为0.1% SDS水溶液为分散介质,采用激光粒度仪对体系中散射光强度波动进行分析,测定6种WPMP油脂乳液及WPC油脂乳液中颗粒布朗运动的速度,利用Stokes-Einstein方程计算得出7种油脂乳液样品的粒径分布。
1.3.3 油脂乳液消化性测定
1.3.3.1 体外消化模型的建立
模拟胃液消化过程。参考文献[15]进行胃液制备,模拟胃液中共包含2.67 g/L黏蛋白、6.67 g/L胃蛋白酶、5 mmol/L KCl、6 mmol/L CaCl2、120 mmol/LNaCl。在胃部消化阶段,取1 g乳液加入12 mL的模拟胃液,混合均匀后,采用1 mol/L HCl水溶液将pH值调至2.5。置于37 ℃水浴锅中,200 r/min避光均匀搅拌1 h。
模拟肠液消化过程。将1 mol/L NaOH水溶液的pH值调至6.8,加入5.60 mL的胆汁提取物(18.63 g/L胆汁提取物、5 mmol/L KCl、6 mmol/L CaCl2、120 mmol/L NaCl)和15.60 mL的胰液(1.12 g/L胰蛋白酶、0.56 g/L胰脂肪酶),混合均匀后置于37 ℃水浴锅中200 r/min均匀搅拌。
1.3.3.2 油脂乳液在消化模型中稳定性的测定
取WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液模拟胃液消化。将20 mL含有油脂乳液的消化液置于平底圆柱形玻璃管(高140 mm,直径16 mm)中,将测试瓶放入检测池中,在37 ℃下每5 min扫描1次,分别连续扫描1 h和2 h。
取7种油脂乳液模拟胃液消化后再模拟肠液消化。将20 mL含有油脂乳液的消化液置于平底圆柱形玻璃管(高140 mm,直径16 mm)中,将测试瓶放入检测池中,在37 ℃下每5 min扫描1次,分别连续扫描1 h和2 h。
1.3.3.3 油脂乳液在消化模型中游离脂肪酸释放的测定
WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液在模拟肠液消化过程中,采用0.01 mol/L NaOH水溶液将pH值维持在6.8,并记录肠液消化10、30、60、120 min时所消耗的NaOH水溶液的体积。根据消耗的NaOH水溶液体积,按照式(3)计算乳液在消化过程中游离脂肪酸(free fatty acids,FFA)释放率[16]。
FFA释放率![]()
(3)
式(3)中,VNaOH是消耗的0.01 mol/L NaOH水溶液体积,mL;cNaOH是所用NaOH水溶液的摩尔浓度,0.01 mol/L;Mlipid是花生油的摩尔质量,0.817 kg/mol;0.6是乳液中油相的质量分数;memulsion是乳液的质量,g。
实验结果重复3次,采用Origin 8.0软件绘图,数据采用IBM SPSS Statistics 26软件进行单因素方差分析(ANOVA),P<0.05认为有显著性差异。
采用激光粒度仪测定6种不同pH值WPMP分散液中WPMP的粒径分布,见图1。由图1可知,所有样品粒径均呈单峰分布,说明颗粒大小均一,因此可以选择中位粒径(d50)进行粒径大小的表征,结果汇总见表1。
图1 pH值对WPMP粒径分布的影响
Fig.1 Effect of pH on particle size distribution of WPMP
表1 pH值对WPMP中位粒径的影响
Tab.1 Effect of pH on median particle size of WPMP
样品d50/μmWPMP(3.5)18.31±0.08aWPMP(4.5)15.25±0.55bWPMP(5.5)6.63±0.15cWPMP(6.5)14.36±0.06bdWPMP(7.5)13.67±0.09deWPMP(8.5)17.35±0.29af
同列不同字母表示数据间有显著性差异(P<0.05)。
由表1可知,pH值对WPMP的粒径有显著性影响。且随着pH值偏离等电点(pH=4.5~5.0),粒径整体增大。这是因为蛋白pH值能直接影响形成的凝胶类型:在等电点附近,蛋白分子表面电荷较少,在热凝胶过程中蛋白质分子链间仅靠疏水相互作用和范德华力维持,因此凝胶倾向于蠕状凝胶且凝胶间作用力较弱[17]。在高速均质过程中,凝胶更容易被破碎成形状规则的颗粒状。而随着pH值逐渐偏离等电点,凝胶过程中蛋白质分子间由氢键、二硫键等多种作用力连接形成较大聚集网络,凝胶硬度较强,不容易破碎,且破碎后凝胶形状不规则[18]。
采用差示扫描量热仪对冻干后的WPMP和WPC进行热力学分析,见图2。由图2可知,WPC和6种WPMP的吸热峰均呈现单峰,说明样品均具有较高的协同性。但是吸热峰的位置和宽度有一定的差异,说明不同pH值下制备的WPMP的热稳定性具有一定差异。
图2 WPC和6种WPMP的DSC分析结果
Fig.2 DSC results of WPC and 6 kinds of WPMP
采用差示扫描量热仪自带TA- 60软件计算WPC和6种WPMP的变性温度和变性焓,测定结果汇总见表2。由表2可知,WPMP(3.5)和WPMP(6.5)与WPC的变性温度并无显著性差异,WPMP(5.5)变性温度显著高于WPC,WPMP(7.5)和WPMP(8.5)的变性温度则显著低于WPC。WPC转变为WPMP后,变性焓则从227.72 J/g分别显著性下降到185.50、227.58、210.72、200.75、218.11 J/g。这是因为WPC的等电点为4.3~5.0,在此pH值范围内,WPC的表面电荷极少。在此pH值下制备的蛋白微凝胶颗粒WPMP(4.5)和WPMP(5.5)具有更高的热稳定性。随着pH值逐渐偏离等电点,WPC分子的静电荷增多,蛋白质分子间的静电排斥作用增强,使得部分蛋白质的分子结构从有序变为无序态[19],制备的蛋白微凝胶颗粒的热稳定性下降。
样品黏度随着剪切速率的变化见图3。由图3上行曲线可知,所有样品的黏度随着剪切速率的增加均呈现下降的趋势,呈现剪切变稀的特性。这是因为在静止或低流速时,高分子链状结构间相互缠结,黏度较大。随着剪切速率的增大,由于流层间剪应力的作用,无序的链状分子滚动旋转而收缩成团,减少了相互间交联,因此黏度逐渐降低[20]。当剪切速率继续逐渐减小或剪切停止时,体系黏度将逐渐恢复,但是这种恢复会有一定的滞后性,见图3下行曲线。
表2 pH值对WPMP变性温度和变性焓的影响
Tab.2 Effect of pH on denaturation temperature and denaturation enthalpy of WPMP
样品ton/℃tp/℃toff/℃ΔH/(J·g-1)WPC35.82±2.36a72.38±2.18a109.89±0.75a227.72±14.13abWPMP(3.5)42.96±15.21a74.52±2.32ab111.04±2.27a185.50±16.33abWPMP(4.5)33.84±6.05a77.34±3.66bc114.23±2.76b227.58±14.97aWPMP(5.5)32.46±7.11a76.28±3.83bc117.29±2.21c233.61±15.35bWPMP(6.5)39.16±0.59a73.01±2.76a114.26±0.71ac210.72±5.29abWPMP(7.5)34.19±0.61a70.94±4.08d111.99±1.31ac200.75±6.03abWPMP(8.5)30.33±0.59a68.39±1.09e105.82±2.35ab218.11±8.40ab
同列不同字母表示数据间有显著性差异(P<0.05)。
采用幂率方程对6种WPMP分散液的静态流变曲线进行拟合,拟合结果见表3。由表3可知,WPMP分散体系的流动指数n均小于1,说明均为非牛顿流体的假塑性流体。回归系数均大于0.91,说明各流动曲线均可采用幂律方程进行拟合。对比各蛋白分散液的下行曲线和上行曲线的n值发现,下行曲线的n值显著大于上行曲线,这是由于在剪切速率上升过程中,部分维持各蛋白分散液稳定性的作用力(如氢键、疏水相互作用等)断裂,因此展示出更强的流动性[21]。
触变性可定义为受试物料在外力作用后内部结构重新组合恢复的过程[22]。图3中各蛋白分散液的下行曲线与上行曲线均未重合,所以6个样品都显示触变行为。触变性能一般由升速曲线(上行曲线)和降速曲线(下行曲线)所包围的面积大小(SR)进行表征。面积较大表示触变性较弱,这表明当剪切速率降低时,该产品结构不能立即恢复到之前的状态[23]。
图3 不同pH值WPMP分散液的静态流变曲线
Fig.3 Static rheological curve of WPMP dispersions with different pH
表3 不同pH值WPMP分散液的静态流变曲线拟合参数和相对触变环面积
Tab.3 Static rheological curve fitting parameters and relative thixotropy loop area of WPMP dispersions with different pH
样品曲线类型静态流变曲线拟合参数knR2SRWPMP(3.5)上行曲线8740.470.350.961.11下行曲线1825.340.570.98WPMP(4.5)上行曲线14479.620.280.910.62下行曲线2123.100.680.99WPMP(5.5)上行曲线27721.760.060.990.42下行曲线755.770.700.85WPMP(6.5)上行曲线41994.690.160.990.47下行曲线10268.250.420.99WPMP(7.5)上行曲线47261.680.210.941.41下行曲线16302.210.430.99WPMP(8.5)上行曲线93295.250.280.982.45下行曲线6243.650.580.97
由表3可知,湿热处理的pH值偏离等电点越多,其相对触变面积越大,这一趋势说明体系恢复到原本状态越慢。其中WPMP (5.5)的相对触变面积最小,为0.42。这可能是由于不同pH值下,形成的蛋白质微凝胶颗粒形状差异导致的[24]。
图4 WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液的粒径分布
Fig.4 Particle size distribution of WPC emulsion and 6 kinds of WPMP emulsions
油脂乳液的粒径分布直接影响了其稳定性和表观性状。图4是WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液的粒径分布。由图4可知,7种油脂乳液的粒径分布均呈现单一峰的正态分布,因此可以采用中位粒径(d50)表征粒径大小。采用仪器自带软件进行粒径分析,得到各样品中位粒径见表4。
表4 WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液的中位粒径
Tab.4 Median particle size of WPC emulsion and 6 kinds of WPMP emulsions
样品d50/μmWPC37.66±1.52aWPMP(3.5)22.55±0.17bWPMP(4.5)15.63±1.42cWPMP(5.5)13.28±1.63dWPMP(6.5)16.21±0.94ceWPMP(7.5)18.02±0.92fWPMP(8.5)19.57±0.25fg
同列不同字母表示数据间有显著性差异(P<0.05)。
图5 WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液在模拟胃液消化过程中背散射光强度
Fig.5 Back-scattering light profile of lipid emulsions stabilized by WPC and 6 kinds of WPMP during digestion in simulated gastric fluid
由表4可知,天然WPC油脂乳液中位粒径最大,为37.66 μm。6种WPMP油脂乳液的油滴粒径显著小于WPC油脂乳液。这说明WPMP在油滴表面的覆盖率显著高于天然WPC。在pH值为3.5~5.5,随着pH值升高,WPMP油脂乳液油滴粒径显著减小。在pH值为5.5~8.5,随着pH值升高,WPMP油脂乳液油滴粒径显著增大。其中WPMP(5.5)油脂乳液油滴粒径最小为13.28 μm。
2.5.1 油脂乳液在消化模型中的稳定性
采用全能型稳定分析仪测定乳液在模拟胃液中背散射光强度曲线,测定结果见图5。由图5可知,随着消化时间的推移,各乳液底部背散射光强度发生不同程度的减小,说明乳液发生不同程度的消化。其中各蛋白稳定的乳液背散射光强度变化程度较高,这是因为胃部含有大量胃蛋白酶分解了油滴表面的蛋白,从而导致乳液失稳的发生[25]。
由图5可知,WPC、WPMP(3.5)、WPMP(4.5) 3种油脂乳液在模拟胃部消化过程中,出现了明显的乳化析出,说明,这3种油脂乳液在胃蛋白酶、低pH值(pH=2.0)双重作用下出现了破乳现象。WPMP(5.5)、WPMP(6.5)、WPMP(7.5)、WPMP(8.5)油脂乳液在模拟胃部消化过程中,并没有出现明显的乳化析出,说明这4种蛋白微凝胶颗粒能够稳定地吸附在油滴表面,保护乳液不受胃部环境破坏。
采用全能型稳定分析仪测定乳液在模拟肠液中背散射光强度曲线,测定结果见图6。肠道是食品消化的主要部位,受到胰液、胆汁和肠液的作用后,蛋白质和油脂逐渐被消化,因此背散射光强度值变化显著。
图6 WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液在模拟肠液消化过程中背散射光强度曲线
Fig.6 Back-scattering light profile of lipid emulsions stabilized by WPC and 6 kinds of WPMP during digestion in simulated intestinal fluid
由图6可知,除WPMP(5.5)油脂乳液外,其他油脂乳液在模拟肠液消化过程中均出现了明显的乳化析出现象。这说明胆盐能够逐渐取代界面上的蛋白微凝胶颗粒,从而为脂肪酶- 辅脂酶的界面吸附提供了位点。WPMP(5.5)油脂乳液展现了较好的稳定性,这说明WPMP(5.5)界面能够阻挡胆盐的界面取代和脂肪酶- 辅脂酶的界面吸附[26]。
2.5.2 油脂乳液在消化模型中游离脂肪酸的释放
油脂乳液在模拟肠液消化过程中,采用0.01 mol/LNaOH水溶液将pH维持在6.8,并记录随着时间推移所消耗的NaOH水溶液的体积。根据消耗的NaOH水溶液体积,计算乳液在消化过程中FFA释放率,结果见表5。
由表5可知,随着模拟肠道消化时间的增加,7种油脂乳液的FFA释放率逐渐增大。在消化120 min后,WPC、WPMP(3.5)和WPMP(4.5)油脂乳液具有最高的游离脂肪酸释放速率,WPMP(6.5)和WPMP(7.5)油脂乳液的游离脂肪酸次之,WPMP(8.5)油脂乳液的游离脂肪酸释放速率更低,WPMP(5.5)油脂乳液的游离脂肪酸释放速率最低。这是因为WPMP(5.5)能够保证油脂乳液在胃肠消化道的稳定,阻止胆盐的界面取代,阻隔脂肪酶- 辅脂酶的界面吸附和消化,这与2.5.1节油脂乳液在体外消化模型中的稳定性部分结果保持一致。结果表明,WPMP(5.5)可以作为乳化剂应用在油脂乳液中,且WPMP(5.5)油脂乳液具有低脂质消化率的特点,因此可以作为新型脂肪模拟物应用在低脂食品中。
表5 WPC油脂乳液和6种WPMP油脂乳液在体外消化模型中游离脂肪酸释放率
Tab.5 FFA release rate of emulsions stabilized by WPC and 6 kinds of WPMP during in vitrodigestive model digestive model
样品消化时间/min103060120WPC0.35±0.01a1.16±0.03a1.74±0.03a2.35±0.06aWPMP(3.5)0.69±0.02b1.40±0.04b1.76±0.04ab2.11±0.07abWPMP(4.5)0.64±0.02bc1.33±0.03bc1.61±0.02c2.10±0.07abcWPMP(5.5)0.25±0.01ad0.48±0.01d0.70±0.04d0.82±0.06dWPMP(6.5)0.26±0.01ade0.82±0.03e1.18±0.05e1.46±0.09eWPMP(7.5)0.27±0.01adef0.78±0.02ef1.10±0.04ef1.30±0.09fWPMP(8.5)0.23±0.01adefg0.71±0.02fg0.82±0.03g0.99±0.07g
同列不同字母表示数据间有显著性差异(P<0.05)。
pH值对WPMP的粒径分布、热力学性质和流变学性质均具有显著性影响:随着pH值偏离等电点,WPMP中位粒径整体增大、热力学稳定性降低、流动指数增大、相对触变面积增大。其中,WPMP(5.5)具有较小的中位粒径6.63 μm、较高的热稳定性、较小的流体指数(n=0.06)和较好的触变性(SR=0.42)。
WPMP油脂乳液油滴粒径显著小于WPC油脂乳液(P<0.05),其中WPMP(5.5)油脂乳液油滴粒径最小为13.28 μm。相对于WPC油脂乳液,WPMP油脂乳液在模拟胃肠消化液中具有更高的稳定性和更低的FFA释放率,说明WPMP界面对消化道内胆盐界面取代、脂肪酶-辅脂酶界面吸附具有一定阻隔作用。且在不同pH值条件下制备的WPMP油脂乳液具有不同的FFA释放率,说明WPMP对乳液消化性的抑制作用受WPMP界面结构调控。研究结果表明,WPMP对油脂乳液的消化吸收具有一定的抑制作用,WPMP(5.5)油脂乳液可以作为低脂食品的原料应用在食品工业中。希望本研究的完成,能够为定向设计乳液结构来抑制油脂消化这一技术的实现提供参考。
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