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第 37 卷 第 3 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 张名位等: 荔枝果肉的主要活性物质及其健康效应研究进展 3

1. 槲皮素鄄3鄄O鄄芸香糖鄄7鄄O鄄琢鄄l鄄鼠李糖苷;2. 芦丁;3. 槲皮素鄄3鄄O鄄芸香糖鄄(1寅2)鄄O鄄鼠李糖苷;4. 山奈酚鄄3鄄O鄄芸香糖鄄(1寅2)鄄O鄄鼠李糖苷;
5. 异鼠李素鄄3鄄O鄄芸香糖鄄(1寅2)鄄O鄄鼠李糖苷;6. 山奈酚鄄3鄄O鄄芸香糖苷;7. 异鼠李素鄄3鄄O鄄芸香糖苷;8. 表儿茶素;9. 原花青素 B2;10. 原花青
素 C1;11. 原花青素 A2。
图 1摇 荔枝果肉主要酚类物质的化学结构
Fig. 1摇 Structures of main phenolic compounds in lychee pulp
取率高,但如果条件控制不好,可能会引起多糖的结 耗较少、产物纯度高、范围大等优点,开始被应用于
构变化,影响其活性。 多糖的纯化中。
提取的粗多糖中常含有蛋白质、色素、低聚糖及 1郾 2郾 2摇 多糖的结构特征
单糖等杂质,影响多糖的纯度以及生物活性。 脱去 多糖的结构分析手段很多,主要包括甲基化分
游离蛋白的方法有 Sevage 法、三氯乙酸法、蛋白酶 析、Smith 降解、部分酸水解法等化学方法,GC -MS、
法等。 Sevage 法比较温和,但需重复多次;三氯乙酸 红外光谱法、核磁共振波谱法等物理方法。 这些方
法较为剧烈,易影响多糖的生物活性;酶- Sevag 联 法只能用于分析多糖的一级结构,而高级结构的研
合法是一种有效的荔枝多糖脱蛋白方法,脱蛋白率 究需结合 X鄄衍射、核磁共振、圆二色谱、原子力显微
[22]
和多糖保留率分别可达到 90郾 97% 和 75郾 22% 。 镜、电子显微镜等方法。
常用的脱色方法有活性炭法和大孔吸附树脂法等。 由于多糖结构的复杂性和特异性,不同的提取
大孔树脂脱色率和多糖保留率分别仅为 75郾 54% 和 分离方法会得到不同分子量和组成的多糖。 目前,
75郾 43% ;活性炭脱色效果较好,但在吸附色素过程 已鉴定出的荔枝多糖级分主要糖链结构见图 2。 陈
中也容易吸附多糖,导致损失率大 [23 - 24] 。 研究发 卫云 [21] 用超声微波酶法提取的荔枝多糖(LCP) 为
现,冷电弧-光催化是一种新的高效快速的多糖脱 卤素取代的 琢鄄吡喃型多糖,由木糖( Xyl)、鼠李糖
色方法, 脱色率高达 91郾 2% , 多糖保留率可达到 (Rha)、核糖(Rib)、甘露糖(Mna)、葡萄糖(Glu)、半
87郾 4% ,但此技术过程较其他方法复杂,目前在植物 乳糖(Gal)和阿拉伯糖(Ara)等单糖组成(物质的量
多糖中的应用较少 [25] 。 比为 1颐 4郾 39颐 6郾 05颐 16郾 07颐 65郾 20颐 23郾 62颐 15郾 25),分
纯化过程是将多糖混合物分离为单一多糖的过 子质量为 79郾 2 kDa;热水浸提法提取的 LCP 为 O鄄糖
程,主要方法有分级沉淀和色谱柱层析。 一般先用 苷键结合的蛋白多糖,分子质量为 60郾 1 kDa,单糖组
不同乙醇浓度沉降制备荔枝多糖,然后通过 DEAE - 成相同, 但物质的量比差异很大。 Hu 等 [26] 通过
52 离子交换柱进行分离,再过 Sephadex G-50 凝胶 DEAE - 52 离 子 交 换 柱 分 离 出 荔 枝 多 糖 亚 级 分
色谱柱进一步纯化,得到单一多糖 [26 - 28] 。 此外,一 LCP50S - 2, 分子质量大小为 219 kDa, 由 L鄄Rha,
些新型的方法如微滤、超滤等膜分离技术因具有损 L鄄Ara,D鄄Gal,D鄄Glu 和 D鄄Xyl 组成( 物质的量比为