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第 35 卷 第 5 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 刘摇 亚等: MOF鄄5 吸附姜黄素及在胃肠中的消化研究 4 7

的释放情况,对姜黄素在体内生物有效性的提高以及 设 3 水平,设计正交试验,见表 1。
控制姜黄素的释放等方面研究进行探索。
表 1摇 因素水平表
Tab. 1摇 Factor level table
1摇 材料与方法
A B C D
因素 m(MOF鄄5) / 籽(姜黄素) / 吸附温度/ 吸附时间 /
1郾 1摇 材料与试剂
- 1
g (mg·mL ) 益 min
姜黄素,西安赛邦医药科技有限公司;胃蛋白酶、
1 0郾 2 0郾 15 30 24
胰酶,北京迪朗生化科技有限公司;牛胆盐,国药集团
2 0郾 3 0郾 20 40 30
化学试剂有限公司;其他化学试剂,北京化工厂。
3 0郾 4 0郾 25 50 36
1郾 2摇 仪器与设备
1郾 3郾 5摇 MOF鄄5 吸附姜黄素后体外消化实验
JJ200 型电子天平,常熟市双杰测试仪器厂;DK
-98-域A 型电热恒温水浴锅,天津泰斯特仪器有限 根据中国药典配制模拟胃液和模拟肠液,参照
公司;KQ-50E 型超声波清洗器,昆山超声仪器有限 Zou 等 [21] 的胃-十二指肠模型进行体外消化实验,
公司;TDL-5-A 型高速离心机,上海安亭科学仪器 略有改动。
厂;Multiskan FC 型酶标仪,赛默飞世尔仪器有限公 1郾 4摇 吸附率计算
司;DHG-9426A 型电热恒温鼓风干燥箱,上海精宏 吸附率计算公式见式(1)。
实验设备有限公司;恒温振荡培养箱,上海太仓实验 C - C
吸附率 = 0 1 伊 100% 。 (1)
设备厂;VEGA3 SB - EASYProbe 型扫描电子显微 C 0
镜,捷克 Tescan 公司;pH 计,上海三信仪器厂。 式(1)中:C 为吸附前姜黄素溶液的质量浓度,
0
1郾 3摇 实验方法 mg / mL;C 为吸附后离心上清液的姜黄素质量浓度,
1
1郾 3郾 1摇 姜黄素标准曲线的建立 mg / mL;C 、C 均通过姜黄素的标准曲线计算。
0 1
配制适量浓度的姜黄素溶液,扫描全波谱,确定
姜黄素最大吸收波长为 426 nm。 以无水乙醇为空 2摇 结果与分析

白建立姜黄素标准曲线,以吸光度为纵坐标,质量浓
2郾 1摇 姜黄素标准曲线分析
度为横坐标,进行线性回归,得到回归方程。
根据实验操作绘制标准曲线,如图 1。 回归方
1郾 3郾 2摇 MOF鄄5 的制备与表征
程为 A = 160郾 7C + 0郾 004 4,R = 0郾 998 8。 结果表
2
[20] 。 将 干 燥 的
采用 直 接 合 成 法 制 备 MOF鄄5
明,姜黄素在 0 ~ 4郾 0 滋g / mL 的质量浓度范围内与吸
MOF鄄5 置于扫描电镜(scanning electron microscope,
光度呈良好的线性关系。
SEM)的样品室中进行扫描分析,以观察 MOF鄄5 的
表面形貌。 将干燥的 MOF鄄5 样品在 4 000 ~ 400
- 1
cm 进行傅里叶红外光谱(Fourier transform infrared
spectrometer,FT鄄IR spectrometer) 扫描,对样品进行
表征。
1郾 3郾 3摇 MOF鄄5 吸附姜黄素单因素实验
选取不同的吸附时间、吸附温度、MOF鄄5 用量、
姜黄素质量浓度进行 MOF鄄5 吸附姜黄素的单因素
实验,离心,测定上清液在 426 nm 下的吸光度,根据
图 1摇 姜黄素标准曲线
标准曲线计算出吸附率。
Fig. 1摇 Standard curve of curcumin
1郾 3郾 4摇 正交试验设计
2郾 2摇 MOF鄄5 的制备与表征结果分析
以 MOF鄄5 质量(因素 A),姜黄素质量浓度(因
素 B),吸附温度(因素 C)以及吸附时间(因素 D)为 直接合成法制备的 MOF鄄5 为白色粉末。 SEM
4 个主要因素,根据单因素实验的吸附率,每个因素 表征如图 2,FT鄄IR 表征如图 3。 用扫描电镜对制备