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2 6 食品科学技术学报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 2017 年 9 月

中含量较高 [7] 。 大麦 茁鄄葡聚糖主要分布在大麦胚 的不同,大麦 茁鄄葡聚糖的含量为 0郾 5% ~ 20% [7 - 9] 。
乳及糊粉层细胞壁中,去壳大麦中 茁鄄葡聚糖占非淀 茁鄄葡聚糖含量从大麦籽粒外层到内层呈现增加的趋
粉多糖组分的 70% ~ 75% ,大麦的胚乳细胞壁中包 势 [10] ,这与 Dornez 等 [11] 通过 4 种不同染色技术的
含约 70% 的 茁鄄葡聚糖,25% 的阿拉伯木聚糖,2% ~ 显微镜分析得到的大麦细胞壁结构的荧光显微照片
4% 左右的纤维素和葡甘露聚糖 [8] 。 根据大麦品种 显示的结果一致(见图 1)。

图 1摇 大麦籽粒的酸性品红-卡尔科弗卢尔荧光增白剂染色荧光显微照片
Fig. 1摇 Fluorescence micrograph of barley kernel, stained with acid fuchsin鄄calcofluor
1郾 2摇 大麦 茁鄄葡聚糖的提取纯化 10% 变化到 100% 。 通过水溶醇沉法得到的大麦 茁鄄
由于大麦 茁鄄葡聚糖含量在籽粒内部分布的不 葡聚糖纯度范围为 40% ~ 100% ,这样的分布范围
同,可以通过不同的制粉工艺对大麦粉路进行分级, 是由于提取 pH 值、温度、时间以及分离纯化所采用
得到 大 麦 茁鄄葡 聚 糖 含 量 最 高 达 19% 的 富 集 组 的处理方式不同造成的。
分 [12] 。 大麦鄄茁 葡聚糖的提取通常是在热水或者碱
性溶液中,也有部分方法在酸性条件下提取 [13 - 17] 。 2摇 大麦 茁鄄葡聚糖的结构
热水浸提法的温度一般大于 65 益,但也有在低于淀
茁鄄葡聚糖是由 茁鄄(1鄄3,1鄄4)鄄糖苷键连接的多聚
粉糊化温度的条件下进行的(45 ~ 55 益),以减少淀
粉对提取的大麦 茁鄄葡聚糖的污染 [16] 。 葡萄糖,是 D鄄吡喃葡萄糖的线性均聚物,一般为每 2
~ 3 个连续 茁鄄(1,4)鄄糖苷键被 1 个 茁鄄(1,3)鄄糖苷键
超声辅助提取大麦 茁鄄葡聚糖 [15] ,同时添加淀粉
隔开,暂无证据证明有 2 个及以上连续的 茁鄄(1,3)鄄
酶水解,相对于传统的水解过程淀粉去除率达到了
糖苷键存在于 茁鄄葡聚糖结构中 [21] 。 在大麦 茁鄄葡聚
[18] 。 糊精和其他低聚糖是酶解的副产物,为了
90%
糖分子中纤维三糖单元 ( DP3) 和纤维四糖单元
除去 茁鄄葡聚糖(293kDa)中低相对分子质量的分子,
可采用切向流的聚砜膜超滤系统去除低聚糖。 超声 (DP4)约占总低聚糖的 90% ~ 95% ,聚合度大于 5
波辅助提取、酶法水解和超滤 3 种方法结合,能够得 的低聚糖含量约在 5% ~ 10% 。 大麦 茁鄄葡聚糖的特
点是连续的 茁鄄(1,4)糖苷键被单个的 茁鄄(1,3)鄄糖苷
到高纯度的 茁鄄葡聚糖 [15, 17 - 18] 。 还有学者研究并优
化了超高温水(110 ~ 180 益)提取大麦 茁鄄葡聚糖的 键分割成许多单元。 Vaikousi 等 [22] 研究了 茁鄄(1鄄3,
1鄄4)鄄葡聚糖的精细结构,根据酶解设计, DP3 和
方案,发现提取率和分子质量较优提取温度为 155
益,这种高压热水提取的主要优点是能够显著减少 DP4 是 主 要 的 酶 解 产 物 ( 占 总 产 物 的 91郾 1% ~
浸提时间 [19] 。 多糖的结构具有多样性,即使具有相 95郾 5% ),而 DP3 / DP4 值在 2郾 80 ~ 3郾 49。 大麦 茁鄄葡
4
似的分子质量,在提取后进行乙醇沉淀时也可能表 聚糖的相对分子质量范围在 3郾 1 伊 10 ~ 2郾 7 伊 10 6
现出不同的沉淀行为。 对于特定的葡聚糖,相对分 Da,这些相对分子质量测定结果表观上的差别主要
子质量越小,完全沉淀时需要的乙醇浓度越高。 Xu 是由于大麦品种、生长环境、溶液中的聚合现象以及
等 [20] 通过对 8 种多糖样品的乙醇沉淀方法进行研 分析方法的不同造成的。
究,发现多糖的相对分子质量从 1 kDa 增加到 270 大麦 茁鄄葡聚糖的分子大小和精细结构对其溶
kDa 时,以 80% 的乙醇沉淀,葡聚糖的回收率也从 解性以及分子构象等有很大影响。 茁鄄葡聚糖的纤